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2012; 7(2):E32366。
DOI:10.1371 / journal.pone.0032366。 EPUB 2012 2月28日。

中性粒细胞细胞外捕集性直接诱导上皮和内皮细胞死亡:组蛋白的主要作用

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中性粒细胞细胞外捕集性直接诱导上皮和内皮细胞死亡:组蛋白的主要作用

蒙娜沙弗齐德等等。 普罗斯一体 2012年
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摘要

中性粒细胞在先天免疫中起着重要的作用,它可以保护宿主免受微生物的入侵。中性粒细胞的抗菌活性是通过释放抗菌肽、吞噬作用以及中性粒细胞胞外陷阱(NET)的形成来介导的。这些结构由DNA、组蛋白和颗粒蛋白(如中性粒细胞弹性蛋白酶和髓过氧化物酶)组成。本研究聚焦于NET对宿主细胞功能的影响,特别是对人肺泡上皮细胞这一主要负责肺内气体交换的细胞的影响。NET与上皮细胞和内皮细胞直接相互作用后,以剂量依赖的方式诱导细胞毒性作用,NET对DNA的消化不会改变NET介导的细胞毒性。NET与组蛋白抗体、聚唾液酸或髓过氧化物酶抑制剂(而不是弹性酶抑制剂)预孵育可降低NET介导的细胞毒性,表明组蛋白和髓过氧化物酶负责NET介导的细胞毒性。虽然活化蛋白C (activated protein C, APC)在纯化系统中确实降低了组蛋白诱导的细胞毒性,但它并没有改变NET诱导的细胞毒性,这表明组蛋白依赖的NET的细胞毒性可以防止APC降解。此外,在lps诱导的急性肺损伤小鼠模型中,肺组织和支气管肺泡灌洗液中均有NET形成。这些数据揭示了NET中蛋白质组分的重要作用,特别是组蛋白,它们可能导致宿主细胞的细胞毒性,并可能参与肺组织破坏。

利益冲突陈述

利益争夺:作者宣布没有存在竞争利益。

数字

图1
图1.净导致肺上皮细胞死亡以浓度依赖性方式。
(a)在用培养基(对照),净或石榴孢菌素治疗4或16小时后评价A549细胞的形态。所示是> 8个独立实验的代表图片,在20×倍率下。(b)通过测量16小时后占用细胞面积的差异来定量来自(a)的细胞生长。(c)用两种浓度的净治疗(3.4和10.1μg/ ml DNA-Net)或Staurosporine治疗16小时后测量A549细胞的多硅藻活性。显示的是三个独立实验的代表性数据(平均值公式的形象SD) *P.<0.05;**P.<0.01;***P.<0.001。(d)对16小时后,用两种浓度的净血液(3.4和10.1μg/ ml DNA-net)或Staurosporine进行乙酸亚偶氮(乙锭-HD,红色),吞蛋白v(绿色),和hoechst 33342(黑色和白色)。显示的是三个独立实验的代表图片。(e)通过形态学分析评价来自(d)的乙锭-HD和annexin-V阳性细胞的百分比。
图2
图2.净诱导在上皮和内皮细胞中的细胞毒性,与消化无关。
(A)用未消化的NET(−)、完全消化的NET (DNase)、部分消化的NET (MNase)或煮沸形式的NET处理A549细胞16小时后,测量细胞毒性的程度。以相同浓度的DNA- net(3.4µg/ml)和DNase或MNase单独作为对照。所示为五个独立实验的代表性数据(平均值公式的形象SD),***P.<0.001,ns =非显着性。(b)用未消化的网( - )或完全(DNA酶)的净和单独的DNA处理16小时,测量细胞毒性的细胞毒性程度。显示的是三个的代表数据(除了在-II,n = 2除外)独立实验(平均值公式的形象SD),NS =非重大。
图3.
图3.组蛋诱导上皮和内皮细胞死亡。
(a)将A549细胞用不同浓度的组蛋白II-A处理16小时,并评估细胞形态。(b)在用各种浓度的组蛋白进行16小时治疗后计算A549细胞数。(c)用200μg/ ml组蛋白处理HUVEC或A549细胞16小时或未治疗(对照)。(d)HUVEC以不同浓度的组蛋白治疗16小时,并测量细胞毒性的程度。B和D是三个独立实验的代表性数据,并且在A和C图片中是来自三个独立实验的代表图片,在20×倍率下。
图4.
图4. APC降低由组蛋白引起的上皮细胞毒性,但不是通过网诱导。
(a)在37℃下在没有或存在100nM人APC的情况下预孵育1小时的组蛋白(200或100μg/ ml)与A549细胞孵育16小时,然后分析细胞毒性。(b)净与APC(质量比APC:净蛋白,1:5,1:2和1:1)温育,或者在37℃下没有APC,然后与A549细胞孵育16小时并测量细胞毒素。将APC单独或有效地封闭的APC(APC + PPACK)与A549细胞一起温育进行控制。(c)DNA酶消化的和(d)未消化形式的网在与100nM APC预孵育20至80分钟,然后与A549细胞孵育16小时,然后测定细胞毒素。显示的是四个独立实验的代表性数据(平均值公式的形象SD),***P.<0.001和ns =非显着性。
图5.
图5.组蛋白抗体和聚均酸可降低净介导的细胞毒性。
(A) NET与不同的组蛋白抗体(DNA/H1, H2A, H2B, H3,瓜氨酸化H3 [cit H3], H4)或同型匹配的对照抗体预孵育。用抗体处理的NET或单独使用NET(−)与A549细胞孵育16 h以分析细胞毒性。显示的是三个独立实验的代表性数据(平均值公式的形象SD),***P.<0.001和ns =非显着性。(b)组蛋白或(c)网与针对组蛋白H4或聚核酸(PSA)的抗体预孵育,然后与A459细胞孵育16小时以分析细胞毒性。注意,聚核酸显着降低了组蛋白和净介导的细胞毒性。
图6.
图6.抑制中性粒细胞弹性蛋白酶不抑制净诱导的细胞毒性。
(A)收集未被刺激的中性粒细胞(Unstim)或被刺激的中性粒细胞(Stim)上清液(50 nM PMA for 4 h),并在无刺激(Unstim)的情况下分析弹性酶活性。填充酒吧)或存在(开放式酒吧)中性粒细胞弹性蛋白酶抑制剂(Nei)。同样地,从刺激的细胞中分离出网,并用DNA酶或MNA酶消化,或者保持未消化的( - ),然后以相同的方式分析弹性蛋白酶活性。(b)在缺乏或存在Nei的情况下在净(dNase-digested)治疗后,测量A549细胞的细胞毒性。对于MNA ase或非消化网以及0.125至1mm的不同NEI浓度,可以看到类似的结果。显示的是三个独立实验的代表性数据(平均值公式的形象SD),***P.<0.001和ns =非显着性。
图7.
图7. myeloperoxidase抑制中度降低了上皮细胞的净诱导的细胞毒性。
未消化或dnase消化的NET在不含或含髓过氧化物酶抑制剂(MPOI)的情况下预孵育,然后NET与上皮细胞、A549或AT-II细胞孵育16 h,并定量细胞毒性。单独MPOI (37ng /ml)对上皮细胞无毒性作用。图中显示的是三个独立实验(对于AT-II细胞,n = 2)的代表性数据公式的形象SD) *P.<0.05和ns =非显着性。
图8.
图8. LPS诱导肺损伤小鼠模型中的净形成。
(A)与对照部分进行小鼠肺部的免疫荧光染色,与对照部分相比,用于DNA /组蛋白(红色),中性粒细胞弹性蛋白酶(绿色)和DAPI(蓝色)。随机选择的插入(1,2和3)的较高倍率视图显示了净结构中的中性粒细胞弹性蛋白酶(绿色)和DNA /组蛋白(红色)的共定位。(b)对来自PBS或LPS处理的小鼠的切片的免疫荧光染色用于DNA /组蛋白(红色),CD46(绿色)作为细胞膜标记和DAPI(蓝色)。随机选择的插入(4,5和6)在LPS处理的肺中显示出在较高倍率视图中的净形成,如细胞外染色质,细胞膜的崩解以及DAPI的弱信号(染色质裂缝的指示)。单独的DAPI和单独的DNA /组蛋白也被示出为插入4,5和6.在A和B中,黄色箭头表示与网相邻的一些组织破坏区域。所示是具有组织染色的10个字段的代表图片。(c)24小时后小鼠免疫荧光染色小鼠在24小时内肌髓氧基酶(MPO,红色),瓜氨酸酶,瓜氨酸组蛋白H3(CIT HIS3,Green)和DAPI(蓝色)进行。所选区域的较高的倍率视图(右塔)显示髓过氧化物酶的共定位,其中瓜氨酸组蛋白H3表示净形成。
图9.
图9.小鼠BALF中的中性粒细胞(PMN)在LPS处理后产生净净。
(a)募集到肿瘤内LPS管理后募集到小鼠BALF的PMN,以不同的时间间隔计算。(b)以相同的时间间隔,在BALF的上清液中测量中性粒细胞弹性蛋白酶活性(自由弹性酶,开放式棒)以及在Balf的Mnase消化颗粒中(净相关的弹性蛋白酶,填充条)。(c)从小鼠的小鼠中分离PMN,用LPS刺激24小时,对DNA /组蛋白(红色),CD46(绿色)和DAPI(蓝色)进行分离细胞的免疫荧光染色(上行)。用pMA进一步刺激分离的PMN 1.5小时(下行);箭头表示净形成,通过细胞外染色质的外观,细胞膜崩解以及染色质解囊来证明。显示的是三个独立实验的代表性数据(平均值公式的形象SD),***P.<0.001。

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参考文献

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